目录
1. 引言 6
1.1γ- PGA的结构与性质 6
1.2γ-PGA的发酵生产 6
1.2.1产生菌 7
1.2.2生物合成途径和机制 7
1.2.3生产工艺流程 8
1.2.4γ-PGA的提取 8
1.2.5产品含量的检测 8
1.3、γ-PGA的应用 9
1.3.1 γ-聚谷氨酸在农业中的应用 9
1.3.2 γ-聚谷氨酸在日用品中的应用 9
1.3.3γ-聚谷氨酸在医药中的应用 10
1.3.4γ-聚谷氨酸作为生物医学材料的应用 10
1.3.5γ-聚谷氨酸在食品工业中的应用 10
1.3.6γ-聚谷氨酸在水处理行业的应用 11
1.3.7γ-聚谷氨酸在其它领域的应用 11
1.4展 望 12
1.5本课题的研究意义 12
2.材料与方法 12
2.1菌种 12
2.2材料与试剂 12
2.3仪器设备 13
2.4培养基 13
2.5培养方法 13
2.6生长曲线的绘制方法 14
2.7γ-PGA的提取和粗产量测定 14
2.8γ-PGA含量的测定方法 14
3.结果与讨论 14
3.1γ- PGA水解条件的探讨[17] 14
3.1.1γ-PGA水解温度的确定 15
3.1.2γ-PGA水解时间的确定 15
3.1.3γ-PGA水解酸用量的确定 16
3.2纳豆芽孢杆菌生长曲线的绘制 16
3.3培养条件的优化 17
3.3.1 250 mL摇瓶装量优化 17
3.3.2 初始水份的优化 17
3.3.3初始pH值的优化 18
3.3.4接种量的优化 19
3.3.5培养温度对γ-PGA产量的影响 19
3.3.6培养时间对γ-PGA产量的影响 20
3.4培养基组成的优化 20
3.4.1培养基固体基质的优化 21
3.4.2外加碳源的优化 22
3.4.3外加氮源的优化 23
3.4.4谷氨酸钠添加量对γ-PGA产量的影响 25
3.4.5柠檬酸钠添加量对γ-PGA产量的影响 25
3.4.6 NaCl的加入量对γ-PGA产量的影响 26
3.4.7葡萄糖、酵母粉、谷氨酸钠、柠檬酸钠含量正交实验优化 27
3.5最优化条件验证实验 28
3.6双缩脲法比较初步确定产品成分 28
4.结论 29
5.展望 29
参考文献: 30
4.结论
(1)探讨出了γ-聚谷氨酸的强酸水解条件,确定了γ-PGA的水解条件:1:4的6mol/L HCl、90℃的恒温加热下水解24h,生物传感器测定水解产物谷氨酸。
(2)工业发酵生产中通常选用处于对数期的菌体作为种子。因此,本实验选择的
最佳种龄是15h,此时的菌体处于对数生长期,活菌数也较高,合成新细胞
的速率最快,故能较好缩短γ- PGA的发酵生产周期。
(3)通过实验得到固态发酵培养基的优化结果为:用去油脂的黄豆粉与麸皮1:1组合,且去脂豆粉粒径大小为0.45以上的固体基质优化,γ-PGA产量较高;实验采用单因子实验与正交试验相结合的方法,优化固体发酵培养基的营养组成,结果表明酵母粉20g/kg,葡萄糖80g/kg,谷氨酸钠40g/kg,柠檬酸钠10g/kg组成的培养基,且添加一定量的盐浓度调节培养基的渗透压,能获得较高的γ-PGA产量。
(4)通过实验得到固态发酵生产γ-聚谷氨酸的优化培养条件为:250mL摇瓶装量为10g固体基质,料水比1:1.2,初始pH值为6.0,8%的接种量(相对于固体基质装量),最佳温度是37℃,最佳发酵时间48h。
(5)在以上实验优化的培养条件和培养基组成的结果,以其最优的条件进行实验,实验结果为γ-PGA粗产量105.37g/(kg固体基质),比前面实验的产品平均水平85.52 g/(kg固体基质)粗产量增加了18.8%,经生物传感分析仪测定产品水解前后的含量,结果显示本产品γ-PGA含量为45.6% 。产品纯度较低,其原因可能是由于固体培养基中较多杂质,如多糖、蛋白质等与产品沉淀混合在一起,另外在微生物发酵的过程中也可能会生成了其他的副产物。
5.展望
(1)γ-PGA水解条件探讨实验中可以发现:由于实验环境条件的限制,产品水解不完全,准确性有待提高;而且用本方法测γ-PGA的含量耗时很长(超过24小时),不适合生产管理的快速检测。期待有更好的检测方法或仪器面世,能直接、快速、准确的测出γ-PGA的含量。
(2)菌种生长曲线绘制的实验存在的问题有:用分光光度计测出的吸光度用来表达菌种的活菌数不够精确,可以大致的表示其生长趋势。如果时间充足条件充分就可以详细研究菌体的生长,准确找出其适合于工业发酵生产的对数生长期。
(3)本实验都是按照常规的实验方法进行微生物发酵的,虽然实验用优化发酵培养条件和培养基组成的方法能提高产量,但技术上没有太大的突破,难以达到高产量。目前有些研究者已经在基因工程菌生产γ-PGA方面有所进展,基于γ-PGA广泛的应用前景,相信不久的将来γ-PGA生产与应用必将取得突破性的进展。